新手带教|RNA定量、纯度与完整性检查

学会用RNA HS荧光定量、理解UV纯度比值与完整性读数,并决定样本能否进入RT。

01本篇适用条件

适用于TRIzol或柱纯化后的总RNA,步骤分为Qubit RNA HS荧光定量、可选UV吸收纯度检查,以及毛细管电泳/变性胶完整性检查。RNA HS染料只用于对应体系,不能以DNA HS或蛋白法替代。若只有微量样本或小RNA富集样本,选适配检测法;本篇不把教学图谱说成真实仪器结果。

02实验原理

浓度、纯度和完整性是三个不同问题:RNA HS主要回答有多少RNA;UV比值提示可能的吸收污染物;电泳/芯片图反映长度分布和降解。每种方法都有检测范围、背景和误差。做RT前还需确认目标输入量、无明显抑制物、无严重降解,并安排NoRT/无模板等后续对照。

03安全与适用范围

按RNA染料SDS、UV光源防护要求和电泳/核酸染料制度操作;含苯酚/胍残液仍按化学危废处理。勿将RNA assay管、移液器或工作台与常规DNA染色区混用。戴新手套,避免核酸酶污染。

04材料与仪器

  • RNA样本、Qubit RNA HS reagent/buffer/两支标准、塑料混液容器和适配荧光计;每管最终200 μL。
  • 可选UV吸收微量分光仪、空白液、低吸附RNase-free管和枪头。
  • RNA完整性电泳平台(毛细管芯片或甲醛变性胶)、合适RNA ladder/阳性参考RNA。
  • 计时器、冰盒、记录模板、样本留样管;Qubit测后不要把RNA染液反向倒回原液。

05配液与用量

Qubit RNA HS体系,按本品牌说明:试剂以1:200稀释入buffer。若同时做2个标准+4个样本,按6管并额外约1管移液余量计算,配约1.4 mL工作液:7 μL RNA HS reagent+1,393 μL buffer,总量1,400 μL。

管工作液加入液总体积
标准1、标准2每管190 μL各10 μL对应标准200 μL
样本198 μL2 μL RNA200 μL

本例预计RNA为50 ng/μL,每管2 μL即100 ng,落在RNA HS每管4–200 ng的检测范围内。取样量可在1–20 μL内调整,须先估算浓度并核对范围。所有管室温放置2分钟后读数。

06时间安排

检查操作耗时注意
Qubit工作液和管10分钟现配、塑料管混合
反应2分钟按同一计时
标准校准+样本读数10–15分钟本批重新读标准
UV吸收(可选)5–10分钟buffer空白匹配
完整性(可选)20–45分钟按平台手册跑胶/芯片
综合判定10分钟逐样本填写放行理由

07开始前的准备

先确认RNA没有反复冻融且管内无可见沉淀。Qubit标准恢复至说明书要求温度,轻轻混匀;避免手握 assay tube升温。样本至少留出RT输入和复测余量。若只有2 μL RNA,先算所需输入量与剩余体积,再决定是否做全部可选项目。

仪器/参数本例设置如何调整与核对
Qubit 4RNA→RNA High Sensitivity→Read Standards依序读标准1、2;记录assay型号
Sample volume2 μL,总反应200 μL输入取样体积,不是200 μL;选ng/μL单位
读数混匀后室温2分钟不手握管身升温;勿重复乘稀释因子
UV分光仪RNA模式、同重溶液空白确认检测范围;不以低浓度比值定合格
完整性平台RNA专用胶/芯片模式上样量、ladder、RIN算法遵循本机手册

08逐步操作

  1. 给每份RNA分配唯一编号,核对提取日期、重溶体积、样本用途和冻融次数。
  2. 轻柔混匀RNA并短暂离心;根据预计浓度选择Qubit取样体积。本例取2 μL、预计100 ng,需确认总量位于4–200 ng范围内。
  3. 新建记录行:Qubit读数、取样体积、浓度单位、RNA总量、UV比值、完整性结果分开填写。
  4. 按每管1:200配Qubit RNA HS工作液;本例6管加余量约7 μL试剂+1,393 μL buffer,用干净塑料管混匀。
    Qubit RNA HS四管设置及体积示意。

    原创教学图解:Qubit RNA HS四管设置及体积示意。

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  5. 标记两支标准和每支样本管盖。不要只标管侧面,避免影响荧光读数窗口。
  6. 每标准加190 μL工作液和10 μL相应标准;每样本加198 μL工作液和2 μL RNA。
  7. 每管涡旋3–5秒,盖紧;样本管间更换干净枪头,防止标准或高浓度RNA交叉污染。
  8. 室温避光/静置2分钟;所有样本一致计时,超过稳定时间按说明重测。
  9. 开机进入RNA High Sensitivity assay,选择重新读取标准;依次插入标准1、标准2并确认仪器识别顺序。
  10. 输入样本实际加入体积2 μL及希望的单位,逐管读数;不要误选DNA HS或把取样体积填成总反应体积。
  11. 计算总RNA量=原样浓度×可用原液体积;单位ng/μL乘μL等于ng。留出RT、复测与存档份额。
  12. 如做UV吸收,先用与RNA重溶完全相同的液体做空白,擦拭测量台,确保液滴不夹气泡。
  13. 加样测A260、A280、A230并记录原始谱线和检测浓度范围;低浓度样本比值不稳定时标为“仅供参考”。
    RNA UV吸收的概念示意,不代表实测光谱。教学模拟,非实验数据。

    原创教学图解:RNA UV吸收的概念示意,不代表实测光谱。教学模拟,非实验数据。

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  14. 若做电泳/芯片,按平台要求输入同量RNA和RNA ladder/参考样本;选择适配总RNA的变性体系,不以未变性DNA胶随意代替。
  15. 查看高分子rRNA主要峰/带是否清楚、低分子拖尾或碎片是否增加;不同物种、细胞类型及平台峰图外观会不同。
    RNA完整、部分降解和严重降解的概念示意图,不是凝胶照片或RIN结果。教学模拟,非实验数据。

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  16. 取得芯片RIN/RQN等仪器指标时,记录软件版本、样本输入量和原始电泳图;不要手工从概念图估算RIN。
  17. 将Qubit、UV、完整性三类结果并排核对。浓度高但电泳严重拖尾时,不能仅凭浓度放行。
  18. 放行至表达分析前确认是否完成去DNA:需要时按所选RNase-free DNase的配套buffer、单位和时间处理,随后完成该体系支持的去除/失活及兼容的RNA清理,不把另一品牌的加热条件直接套用。处理后重新测浓度和可用体积,必要时复查完整性;不能沿用处理前浓度算RT输入。随后再按验证范围为各样本统一RNA输入,并安排NoRT与NTC。
  19. 记录放行、重提或cleanup理由。若无统一放行阈值,标明“平台/项目标准待确认”,不能伪造通用门槛。
  20. 将剩余RNA分装、标记浓度/日期后放回经验证低温环境,登记冻融次数。

09结果判断与质控

Qubit RNA HS给出的是其校准算法对原RNA样本的估计浓度;本例技术文件指出对应 assay总量窗口约4–200 ng,超范围需改变取样量或选择另一适配方法。UV谱峰应看原始曲线而非只看比值;低浓度RNA不能用吸收比做强结论。完整性示意图只解释条带/峰形概念,不是仪器截图或模拟RIN。任何放行阈值须来自项目验证、样本类型和下游应用。

10实验记录模板

样本Qubit RNA HS ng/μL总量ng取样μLA260/280A260/230UV谱异常完整性方法/结果冻融次数RT放行决定/理由
待填待填浓度×体积2或实填待填待填待填待填待填待填
去DNA前浓度DNase体系/批次去除或失活/清理记录处理后浓度ng/μL处理后可用μLRT输入ngNoRT结果
待填待填依该体系说明重新测量待填按处理后浓度计算后续回填

11常见问题与排错

Qubit标准不通过或样本不重复

检查标准顺序、工作液比例、涡旋/孵育、输入体积、管外污渍/指纹及assay类型;换新标准重新校准。

Qubit显著低于UV

UV可能受DNA、游离核苷酸或污染吸收影响;检查空白与样本浓度,优先用适配荧光定量估算RNA。

A260/230偏低

可能有酚、胍盐或盐残留;考虑cleanup并复测,同时关注下游RT抑制。

完整性图异常

先查参考RNA、上样量、芯片/胶操作和样本放置时间;确认异常后考虑重提。RIN数值必须来自适配平台,不能凭肉眼猜。

12参考资料

  • Thermo Fisher, *Qubit RNA HS Assay User Guide*, Rev B.0, physical pp.1, 4–5;本文限RNA HS配置与所述体积。
  • 本站原创判断流程和概念图;没有捏造RIN或实测光谱。完整依据见 beginner-source-review.md。
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做完最后一步,再核对原始记录。填写实际用量、起止时间与观察结果;遇到异常,先记录,再查看排错说明。