石蜡切片H&E染色:从已取得切片到封片

从已合规取得、固定包埋并贴附的4–5 μm石蜡教学切片开始,每批2张实验片加1张已知正常形态质控片。

01本篇适用条件

从已合规取得、固定包埋并贴附的4–5 μm石蜡教学切片开始,每批2张实验片加1张已知正常形态质控片。无新鲜人体/动物取材,无动物操作。选择与Leica基线流程匹配的商用退行性苏木精、温和分化剂、返蓝液及酒精性伊红体系,由组织学带教人员指导。

02实验原理

脱蜡复水后苏木精显示细胞核,经分化和返蓝获得清晰蓝紫核;伊红显示胞质和基质粉红色,随后脱水透明封片。染色时间依明确体系与切片而调,每次只调整一种染液时间,不能混用Mayer渐进性和强分化退行路线。

03安全与适用范围

二甲苯、乙醇、染液及树胶在通风橱中使用,二甲苯易燃且有害,避免吸入;玻片防割伤,配戴手套护目镜。含二甲苯废液与水性染液按本地规范分类。本文只用已固定切片,不操作甲醛取材固定。

04材料与仪器

实验切片2张、正常质控片1张、玻片架和带盖染缸;二甲苯、100%与95%乙醇、清洁水、完整退行性苏木精/温和分化剂/返蓝液/酒精性伊红试剂体系、兼容二甲苯的中性树胶、盖玻片、显微镜、计时器。

05配液与用量

浴液每缸50 mL安排/计算
二甲苯即用50 mL×4缸脱蜡2缸+末透明2缸
100%乙醇即用50 mL×4缸复水2缸+末脱水2缸
95%乙醇无水乙醇47.5 mL,加水补至50 mL复水/伊红前/伊红后各独立缸
苏木精/温和分化/返蓝/伊红各50 mL已验证即用液不跨体系稀释;3片全部被液体覆盖
水洗独立流动水或定期换新清水缸避免把染缸残液交叉带入
封片每片约1–2滴树胶,视盖片大小调整以无气泡完全覆盖组织为终点

06时间安排

阶段次序与时间合计
脱蜡复水二甲苯2×2分钟;100%乙醇2×2分钟;95%乙醇2分钟;水2分钟12分钟
核染苏木精3分钟;水1分钟;温和分化1分钟;水1分钟;返蓝1分钟;水1分钟8分钟
伊红95%乙醇1分钟;伊红45秒;95%乙醇1分钟2分45秒
脱水透明100%乙醇2×1分钟;二甲苯2×2分钟6分钟
封片质控室温约15–30分钟

07开始前的准备

先确认切片已烘片固定于载玻片,无松脱;不得为了“更快”提高烤片温度。Leica基线未指定所有染液化学浓度,本文要求使用本实验室已验证的匹配退行性试剂,不以不明盐酸百分比重配。先染质控片确认3分钟/45秒适配本套染液,再同批染实验片;若未验证体系,先只做质控小试。

08逐步操作

  1. 核对三张切片身份、厚度、组织面方向和附着,记录已固定包埋来源与质控片编号。
  2. 通风橱中排列染缸并加盖,标二甲苯、100%/95%乙醇、水、苏木精、温和分化、返蓝和伊红。
    H&E染色系统与流程检查

    指南Step54。完整保留指南原图;只用于提示核对染色系统,本篇仍逐缸人工计时,不将图中设备参数移植。

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  3. 质控片先进入二甲苯第一缸2分钟,再第二缸2分钟,确认切片无可见蜡膜。
    残蜡引起H&E局部拒染

    指南Step55。完整保留残蜡相关异常视野,脱蜡不足应返回排查,不能只延长苏木精染色掩盖。

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  4. 转入100%乙醇两缸各2分钟,再95%乙醇2分钟,清水洗2分钟,完整复水。
    H&E复水不足的染色异常

    指南Step57。完整保留指南复水对照;脱蜡后逐级复水,不能让切片在缸间干燥。

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  5. 入本套退行性苏木精3分钟,清水洗1分钟;不让切片在缸间干燥。
    H&E苏木精浑浊与沉积伪影

    指南Step56。完整保留皮肤视野及原有标识,核查染液质量与过滤维护;不擦刮组织来去背景。

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    H&E苏木精质量监测

    指南Step58。完整保留原对照图,核染异常须核对染液和分化状态,保留原始失败记录。

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  6. 温和分化剂1分钟,清水洗1分钟;用同一完整体系,不用旧文含义不明“75%盐酸酒精”。
  7. 返蓝液1分钟,再清水1分钟,检查核色转蓝紫且结构可辨。
    H&E完全返蓝对照A

    指南Step59。A/B图作为同一对照系列完整保留。核颜色受返蓝影响,应在本体系中检查蓝紫核及清晰结构。

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    H&E完全返蓝对照B

    指南Step59。A/B图作为同一对照系列完整保留。核颜色受返蓝影响,应在本体系中检查蓝紫核及清晰结构。

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  8. 95%乙醇1分钟,再酒精性伊红45秒,取出后滴去多余液体但不风干。
    H&E伊红不均匀示例

    指南Step60。完整保留伊红不均匀原图,核查水带入、试剂和缸间操作,不能只选择均匀区域拍照。

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    H&E伊红pH相关着色差异

    指南Step61。完整保留原pH对照;本篇使用匹配即用伊红,不据图自行加入不明浓度酸碱。

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  9. 转95%乙醇1分钟,再100%乙醇两缸各1分钟,完成脱水,不把含水酒精当无水脱水终点。
  10. 二甲苯两缸各2分钟,保持透明;出现乳白说明带水,回到合适乙醇脱水阶段排查。
    H&E脱水不足影响透明与封片

    指南Step62。完整保留原异常示例;透明发白时先查残水,不加更多树胶遮盖。

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  11. 在组织面加适量兼容树胶,盖片一侧先接触后缓缓放下,避免气泡压在组织上。
    H&E干燥与结晶伪影

    指南Step63。完整保留A/B全部panel,避免切片在转缸和封片时干燥;记录伪影,不修改图像掩盖。

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  12. 树胶稳定后先低倍检查质控片,再10×/40×看核染质、胞质及基质,确认核蓝紫、胞质粉红且无大面积拒染。
    皮肤H&E核与胞质平衡

    原Fig1。完整保留皮肤切片原图。蓝紫细胞核与粉红胞质的对比供本次质控参考,组织、厚度和染液不同会改变外观。

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    结肠H&E完整上皮形态

    原Fig2。完整保留结肠切片原图,可观察核色与上皮结构;图片来自原指南,非本站实验结果。原图摄影:Stanley Hansen。

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    胎盘H&E红细胞与周围组织

    原Fig3。完整保留红细胞和周围组织对比,说明伊红嗜染性差异;不以图片进行临床判断。

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    肾小球与肾小管H&E

    原Fig4。保留原红蓝箭头和完整视野;红箭头为肾小球,蓝箭头为肾小管,供核与胞质着色比较。

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    H&E核染与有丝分裂形态

    原Fig5。完整保留原形态视野,说明苏木精显示核染质;原图来自Frontalcortex.com,仅作染色技术示例,不用于病理诊断。

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    H&E胞质与红细胞伊红强度比较

    原Fig7。完整保留血管及周围组织,红细胞比胞质伊红更深,评价核/胞质平衡时须考虑组织成分。

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    结肠H&E杯状细胞黏液形态

    原Fig9。完整保留结肠视野及杯状细胞,黏液可呈淡染或透明;不能把所有浅区解释为脱蜡失败。

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    H&E淋巴结组织染色表现

    原Fig12。与原Fig13成对保留,同为4 μm切片也会因组织细胞组成呈现不同颜色,不能用单一组织替代所有质控。

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    H&E肾组织染色表现

    原Fig13。与原Fig12成对保留,同一染色程序和4 μm切片厚度下,肾与淋巴结的核/胞质比例不同。

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    H&E肾组织良好核胞质对比

    指南Step53。保留原图完整视野作为质控示例,评估核清楚、胞质适中及组织结构完整。

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  13. 质控通过后按同一批试剂与时间处理两张实验片;若需调色,苏木精每次调整30秒或伊红15秒,仅改一种并重新核验。
    H&E苏木精相对过深示例

    原Fig10。完整保留核染占主导的结肠原图。用于与合格质控比较;可一次只调整苏木精或伊红时间,再重做质控。

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    H&E核淡而伊红占主导示例

    原Fig11。完整保留原肾组织图,核色被伊红背景压低;需核查苏木精、分化和厚度后逐项调整。

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    H&E染色变量与一致性

    指南Step52。保留原图全部对照;控制试剂、时间与切片条件才能比较,不从某一张最好看的视野宣布整批合格。

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  14. 保存全切片/代表视野图,记录试剂批次、时间和质控结论;标记片号、日期与封片体系,归档干燥避光。

09结果判断与质控

质控核结构清楚、核蓝紫与胞质粉红平衡,组织附着完整,无大面积残蜡、皱折或水雾。H&E只能显示形态,不能凭教学图片做临床诊断。实验片与质控都须记录,不能只选择染色最好的区域宣布整批合格。

10实验记录模板

片号/来源/厚度染液体系/批次脱蜡/复水苏木精/分化/返蓝伊红/脱水/透明质控核/胞质脱片/气泡图像/时间调整
待填待填待填待填待填待填待填待填

11常见问题与排错

局部无染:查蜡与脱片。核淡:检查苏木精、分化过度及切片厚度,只改一种参数重做质控。伊红太浅:查水带入及酒精脱色过久。透明发白:查脱水不足,不继续加树胶掩盖。

12参考资料

旧来源:短版物理26–27页,其中H&E主体在27页。现代核对:Leica Biosystems,H&E Staining Overview: A Guide to Best Practices,现行技术指南基线时间表,查阅2026-11-02。采用二甲苯2×2分钟、苏木精3分钟、温和分化/返蓝各1分钟、伊红45秒及逐一调时间原则;替换旧文Mayer染液与含义不明“75%盐酸酒精1–2分钟”混合路线,严格从已取得切片开始。

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做完最后一步,再核对原始记录。填写实际用量、起止时间与观察结果;遇到异常,先记录,再查看排错说明。